糖尿病肾病（ diabetic nephropathy ， DN ）是 2 型糖尿病（ type 2 diabetes ， T2DM ）最常见且最严重的并发症之一，是终末期肾脏疾病（ end stage renal disease ， ESRD ）的主要原因 [1] 。在 2017 年因 DN 死亡的人约为 219 451 ，从 1990 年开始呈现稳定增长趋势 [2] ，到 2035 年，全球范围内 35% ～ 40% 的 T2DM 会发展为 DN[3] ，这给家庭和社会带来严重的经济及心理负担。目前，治疗 DN 并没有特定药物，主要通过控制血糖和血压来降低发生 ESRD 的风险，但并不能长期阻止 DN 的进展。因此，寻求改善糖尿病肾病的方法具有重要意义。

中药长期应用于糖尿病及其并发症的治疗，具有不良反应少、安全性高等特点。当归是临床上治疗 DN 的方剂中最常用的中药之一，并且具有良好的临床疗效。当归多糖作为当归的主要活性成分，具有改善贫血、抗肿瘤、免疫调节、降血糖、调血脂 [4] 、治疗糖尿病肾病 [5] 的药理作用，可以改善 DN 。当归多糖是天然植物提取物，具有多途径、多靶点、成分稳定等优点，能够通过多种机制作用于疾病，因此将当归多糖开发为治疗 DN 的药物具有良好的前景。但当归多糖对 DN 的疗效和潜在机制尚不完全清楚，还需进行多层次的研究。

肾脏中含有丰富的线粒体，是线粒体含量第二高的器官 [6-7] 。越来越多的研究表明，线粒体功能障碍在糖尿病肾脏疾病的发病机制中起着重要作用 [8] 。线粒体质量控制的缺失会导致线粒体功能障碍，因此维持线粒体稳态和质量控制对 DN 至关重要。线粒体质量控制中重要的一个环节就是线粒体自噬，通过选择性的清除受损或多余的线粒体，从而保护正常的线粒体功能 [9] 。目前许多研究发现，调控线粒体自噬能改善 DN ，是防治 DN 的重要作用机制之一 [10-11] 。线粒体自噬由 PTEN 诱导的蛋白激酶 1 （ PTEN induced putative kinase 1 ， PINK1 ） / Parkin 通路和线粒体自噬受体信号通路介导 [11] ，磷酸腺苷激活的蛋白激酶（ AMP-activated protein kinase ， AMPK ）为线粒体代谢和线粒体自噬的关键参与者 [12-13] 。本研究通过观察当归多糖在 DN 中的作用，探索当归多糖在 KK-Ay 小鼠 T2DM 模型中与 AMPK 介导的线粒体自噬相关的潜在机制。

1 材料

1.1 动物

SPF 级雄性 KK-Ay 小鼠 50 只、 C57BL/6J 小鼠 10 只， 10 ～ 12 周龄，体质量（ 38 ± 2 ） g ，均购自北京华阜康生物科技有限公司，许可证号 SCXK （京） 2019-0008 。高糖高脂饲料、普通小鼠饲料购自甘肃中医药大学实验动物中心。动物饲养于甘肃中医药大学实验动物中心，每 5 只为一笼，昼夜循环，充分保证小鼠的适宜活动空间，每周更换 2 次笼内垫料，确保小鼠生存环境的洁净，室内温度为 26.7 ℃，自由进食饮水。动物实验经甘肃中医药大学动物伦理委员会批准（批准号 2021-368 ）。

1.2 药品与试剂

当归多糖（批号 CY210714 ，多糖质量分数为 98.14% ）购自西安杨凌慈缘生物技术有限公司；厄贝沙坦片（批号 DA282 ，国药准字 J20080061 ）购自杭州赛诺菲安万特民生制药有限公司；尿微量白蛋白（ urine microalbuminuria ， U-ALB ）、肌酐（ creatinine ， SCr ）、尿素氮（ urea nitrogen ， BUN ）试剂盒（批号分别为 202205 、 m1092663 、 m1210673 ）购自上海酶联生物科技有限公司；苏木素 - 伊红（ HE ）染色试剂盒（批号 20191104 ）购自北京索莱宝科技有限公司；微管相关蛋白 1 轻链 3 （ microtubule-associated protein 1 light chain 3 ， LC3 ）抗体（批号 BST17924827 ）购自武汉博士德生物工程有限公司； p62 抗体（批号 00048269 ）购自 Proteintech 公司； Nix 抗体（批号 GR39116-6 ）、甘油醛 -3- 磷酸脱氢酶（ glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase ， GAPDH ）抗体（批号 GR303514-13 ）购自英国 Abcam 公司；线粒体动力相关蛋白 1 （ dynamin-related protein 1 ， Drp1 ）抗体（批号 AB04263210 ）、 AMPK 抗体（批号 bsm-3426M ）、哺乳动物雷帕霉素靶蛋白（ mammalian target of rapamycin ， mTOR ）抗体（批号 bs-1992R ）购自北京博奥森生物科技有限公司；山羊抗兔二抗（批号 CR2102123 ）购自武汉赛维尔生物科技有限公司； RNAex Pro RNA 提取试剂、 Evo M-MLV 反转录预混型试剂盒、 SYBR Green Pro Taq HS 预混型 qPCR 试剂盒（批号分别为 A3A2161 、 A4A0056 、 A4A0185 ）购自 Accurate Biotechnology 。

1.3 仪器

5424R 型高速冷冻离心机（德国 Eppendorf 公司）； iMark 酶标仪、梯度 PCR 仪（美国 Bio-Rad 公司）； StepOne Plus 实时定量 PCR 仪（美国 Thermo 公司）； MX-S 型涡旋振荡器（美国赛洛捷克公司）； DYCZ-40G 型 Western blotting 转膜仪、 DYCZ-25D 型电泳仪（北京六一生物科技公司）； MiniChemi 610 型化学发光成像仪（北京赛智科技有限公司）； ACCU-CHEK Performa 血糖仪（瑞士罗氏公司）； DM2500 型显微镜（德国 Leica 公司）。

2 方法

2.1DN小鼠模型建立、分组及给药

小鼠适应性喂养 1 周，取 10 只 C57BL/6J 小鼠作为正常组，以普通饲料喂养； 50 只 KK-Ay 小鼠用高糖高脂饲料喂养。 KK-Ay 小鼠是 T2DM 的自发动物模型，随机监测小鼠血糖， KK-Ay 小鼠随机血糖≥ 13.9 mmol/L ，出现微量蛋白尿，即视为成功构建 DN 模型 [14-15] 。将造模成功的 KK-Ay 小鼠随机分为模型组、厄贝沙坦（ 25 mg/kg ）组和当归多糖高、中、低剂量（ 400 、 200 、 100 mg/kg ，根据人和动物体表面积等效剂量比率表计算 [16] ）组，每组 10 只。各给药组 ig 相应药物，正常组和模型组 ig 等体积生理盐水， 1 次 /d ，连续 4 周。

2.2 取样

末次给药后，收集小鼠 24 h 尿液，于 −20 ℃保存待测；小鼠禁食不禁水 12 h 后， ip 10% 水合氯醛麻醉，行心脏采血， 4 ℃、 3500 r/min 离心 10 min ，分离血清， −80 ℃保存备用。快速分离两侧肾脏，左肾置于 4% 多聚甲醛中，室温固定备用；右肾纵向切开去除肾髓质， −80 ℃保存备用。

2.3 小鼠一般情况及生化指标检测

观察小鼠皮毛的光泽度、活动度、精神状态及进食情况等。按照试剂盒说明书检测 U-ALB 、 SCr 、 BUN 水平。

2.4HE染色观察肾脏组织病理学变化

取出固定在 4% 多聚甲醛中的肾组织，经脱水、浸蜡、包埋后，将包埋好的蜡块切成薄片，然后进行 HE 染色，于显微镜下观察并拍照。

2.5Western blotting检测线粒体自噬蛋白LC3、p62、Nix和线粒体裂变蛋白Drp1的表达

取研碎的肾组织 200 mg ，加入 RIPA 蛋白裂解液 2 mL ，冰上充分裂解， 4 ℃、 12 000 r/min 离心 15 min ，取上清。使用 BCA 法进行蛋白定量分析，加 30 μL 5 ×上样缓冲液，混匀，在 100 ℃沸水中加热 10 min 使蛋白变性。蛋白样品经 12% 十二烷基硫酸钠 - 聚丙烯酰胺凝胶电泳，转至 PVDF 膜，用 5% 脱脂牛奶封闭 1.5 h ，分别加入 p62 （ 1 ∶ 1000 ）、 Nix （ 1 ∶ 1000 ）、 Drp1 （ 1 ∶ 1000 ）、 LC3 （ 1 ∶ 500 ）、 GAPDH （ 1 ∶ 3000 ）抗体， 4 ℃孵育过夜； TBST 洗膜，加入二抗（ 1 ∶ 6000 ），室温孵育 1 h ， TBST 洗膜，滴加发光液，反应 5 min 。使用化学发光成像仪曝光，采用 Image J 软件分析条带灰度值。

2.6 免疫组化检测肾组织AMPK和mTOR蛋白表达

取肾组织石蜡切片，脱蜡、水化，柠檬酸钠热修复 2 次， 3% H2O2 孵育 15 min ，血清 37 ℃封闭 30 min ，滴加 AMPK 、 mTOR 抗体（ 1 ∶ 100 ）， 4 ℃孵育过夜， 37 ℃复苏后，滴加二抗， 37 ℃孵育 30 min ，滴加三抗， 37 ℃孵育 30 min ， DAB 显色，苏木素复染，中性树胶封片。在每张切片中选取 5 个视野，使用 Image Pro Plus 6 软件进行分析。

2.7qRT-PCR检测肾组织AMPK、mTOR mRNA表达

取 100 mg 肾组织研磨成粉末状，加入 1 mL RNAex Pro 提取总 RNA ，经超微量分光光度计测定 RNA 的浓度和纯度，将 RNA 逆转录成 cDNA ，进行 qRT-PCR 分析。引物序列见表 1 。

2.8 统计学分析

结果采用 SPSS 21 统计软件分析，数据资料用 表示，组间两两比较采用 t 检验，多组间比较采用单因素方差分析。

3 结果

3.1 当归多糖 对DN小鼠体征的影响

实验期间，模型组出现多饮多食、皮毛枯槁易 脱落、蜷缩懒动等现象，甚至出现皮肤溃疡等并发症。各给药组小鼠症状和体征较模型组有明显改善。

3.2 当归多糖 对DN小鼠肾功能的影响

如表 2 所示，与对照组比较，模型组 U-ALB 、 SCr 、 BUN 水平均明显升高（ P ＜ 0.01 ）；与模型组比较，厄贝沙坦组和当归多糖高、中剂量组 U-ALB 、 SCr 、 BUN 水平均明显降低（ P ＜ 0.05 、 0.01 ），且呈剂量相关性。

3.3 当归多糖 对DN小鼠肾脏病理变化的影响

如图 1 所示，对照组肾组织结构清晰完整，细胞大小均一，肾小管排列紧密，基底膜完整，未见炎性细胞浸润；与对照组比较，模型组肾小管壁出现大量空泡样变性，肾组织排列疏松，出现间隙，结构紊乱，肾小球出现萎缩，出现炎性细胞浸润；与模型组比较，厄贝沙坦组细胞排列紊乱，肾小管依然有较多空泡，且组织内有出血现象，肾小球基底膜损伤，肾小球萎缩；当归多糖各剂量组细胞排列逐渐紧密，空泡样变性明显减少，肾小管排列整齐，肾小球逐渐恢复大小，肾小管壁逐渐完整，出血现象减少，且呈剂量相关性。

3.4 当归多糖 对DN小鼠肾组织LC3、p62、Nix蛋白表达的影响

如图 2 所示，与对照组比较，模型组小鼠肾组织 LC3Ⅱ/LC3Ⅰ 、 Nix 蛋白表达水平均显著升高（ P ＜ 0.01 ）， p62 蛋白表达水平显著降低（ P ＜ 0.01 ）；与模型组比较，厄贝沙坦组和当归多糖高剂量组 LC3Ⅱ/LC3Ⅰ 蛋白表达水平显著降低（ P ＜ 0.01 ），厄贝沙坦组和当归多糖低、高剂量组 Nix 蛋白表达水平显著降低（ P ＜ 0.01 ），各给药组 p62 蛋白表达水平显著升高（ P ＜ 0.01 ）。

3.5 当归多糖 对DN小鼠肾组织Drp1蛋白表达的影响

如图 3 所示，与对照组比较，模型组小鼠肾组织 Drp1 蛋白表达水平显著升高（ P ＜ 0.01 ）；与模型组比较，厄贝沙坦组和当归多糖高、中剂量组 Drp1 蛋白表达水平显著降低（ P ＜ 0.01 ）。

3.6 当归多糖 对DN小鼠肾组织AMPK、mTOR mRNA表达的影响

如表 3 所示，与对照组比较，模型组小鼠肾组织 AMPK 、 mTOR mRNA 表达水平均显著升高（ P ＜ 0.01 ）；与模型组比较，各给药组小鼠肾组织 AMPK 、 mTOR mRNA 表达水平均显著降低（ P ＜ 0.01 ）。

3.7 当归多糖 对DN小鼠肾组织AMPK、mTOR蛋白表达的影响

如图 4 和表 4 所示，与对照组比较，模型组小鼠肾组织中 AMPK 、 mTOR 蛋白表达水平均显著升高（ P ＜ 0.01 ）；与模型组比较，厄贝沙坦组和当归 多糖中、高剂量组 AMPK 、 mTOR 蛋白表达水平均显著降低（ P ＜ 0.05 、 0.01 ）。

4 讨论

自发性 T2DM 动物模型 KK-Ay 小鼠在 8 ～ 20 周龄中表现出 DN ，其肾小球的病理变化与人类 DN 的早期阶段一致 [17] ，因此 KK-Ay 小鼠被认为是研究 DN 的合适动物实验模型。根据中医理论，气虚血瘀是 DN 的常见证型，随着病情的发展，会出现阴血亏虚、瘀血阻滞，因此，补血活血化瘀是中医治疗 DN 的关键。当归具有补血活血的功效，是治疗 DN 的常用中药。当归的活性成分当归多糖具有改善 DN 的疗效 [18-19] ，但是具体机制并不完全清楚。

在 DN 大鼠模型中，当归多糖可降低肾组织中炎性指标，改善 DN[18] 。石毅琼 [19] 发现当归多糖能抑制肾小管上皮细胞转分化的发生，通过降低转化生长因子 -β1 （ transforming growth factor-β1 ， TGF-β1 ） / S mads 信号通路活性延缓糖尿病肾纤维化的发展。本研究结果显示，当归多糖能够降低 KK-Ay 小鼠 U-ALB 并改善了肾损伤， AMPK 介导的线粒体自噬在 KK-Ay 小鼠的肾脏中被激活，给予当归多糖干预后线粒体自噬下调。

越来越多的研究证明线粒体功能障碍会影响 DN 的发展 [8] 。线粒体不断通过裂变融合、生物发生及线粒体自噬保持动态平衡，其中线粒体自噬可以清除受损线粒体发挥着重要作用 [20] 。然而线粒体自噬是一把双刃剑，中度线粒体自噬可去除受损线粒体，减少细胞死亡和组织损伤，而线粒体自噬障碍或线粒体自噬过度都可引起细胞能量代谢紊乱，加重细胞凋亡 [21] ，表明线粒体自噬过度对细胞是有害的。先前的研究报道 DN 的线粒体自噬状态并不一致。在链脲佐菌素诱导的糖尿病小鼠模型中， AMPK 激动剂二甲双胍能通过 p-AMPK/PINK1/Parkin 通路激活线粒体自噬，改善肾小管间质纤维化 [22] ， AMPK 通路的激活会诱导线粒体自噬并促进线粒体裂变 [23] 。益气解毒方能够抑制 DN 大鼠模型的线粒体过度自噬 [24] ，黄芪甲苷可以减轻 PINK1/Parkin 介导的肾小管上皮细胞线粒体自噬 [25] 。这些不同的结果也可能是受动物模型、用药剂量及实验周期等因素的影响，因此，还需进一步研究药物在不同的动物模型或其他条件下对线粒体自噬水平的影响，观察这种变化对 DN 是有益还是有害。

AMPK 充当细胞的能量传感器，是线粒体生物发生的关键调节剂，其激活会促进线粒体自噬。 AMPK 与下游分子协同作用在线粒体自噬中发挥着重要作用， mTOR 是 AMPK 的关键下游靶点，是自噬的负调节因子 [26] 。 LC3 和 p62 是重要的自噬标记蛋白。 p62 通过与 LC3 结合，诱导自噬体形成，从而吞噬并清除受损线粒体， p62 水平与自噬通量成反比。当自噬体形成时，胞质蛋白 LC3I 通过酶水解转化为 LC3 Ⅱ ， LC3 Ⅱ 的升高代表自噬的开始 [27] ，因此 LC3 Ⅱ /LC3Ⅰ 值的大小可估计自噬水平的高低。 Nix 是一种线粒体自噬受体蛋白，能够与 LC3 蛋白结合诱导线粒体自噬的发生 [28] ，线粒体自噬随着 Nix 的增加而增强。线粒体裂变是线粒体自噬的先决条件，通过将线粒体分裂成易于自噬体吞噬的片段，然后将其包裹在自噬囊泡中 [29] ，促进线粒体自噬清除受损线粒体 [30] 。 Drp1 是线粒体裂变的主要调控因子，促进 Drp1 表达有助于线粒体裂变 [31] ，线粒体裂变过多是糖尿病肾脏中线粒体功能障碍的特征之一，其过程对肾脏有害。 Drp1 过表达不仅增加了线粒体裂变，而且加速了线粒体自噬通量，线粒体裂变和线粒体自噬之间具有相互正向作用 [32] ，线粒体裂变可以诱导线粒体自噬发生，因此在本实验中研究了线粒体裂变。

本研究结果显示，线粒体裂变调节因子 Drp1 在模型组小鼠肾脏的表达显著上调，在当归多糖组的表达显著降低，这表明当归多糖抑制了 DN 小鼠的线粒体分裂。与模型组相比，当归多糖组小鼠肾脏的线粒体自噬相关蛋白 LC3 、 Nix 的表达明显下降， p62 的表达明显增加， AMPK 、 mTOR 蛋白及 mRNA 的表达下降，其中当归多糖高剂量组疗效最佳，表明当归多糖抑制了 DN 小鼠的线粒体自噬。 mTOR 是 AMPK 的下游靶点， AMPK 能够抑制 mTOR 的活性从而激活自噬，而在本研究结果中发现， AMPK 并没有抑制 mTOR 活性，因此推断当归多糖可能不是通过 AMPK/mTOR 信号轴调节线粒体自噬，而是通过抑制 AMPK 通路及其他下游分子来减轻线粒体自噬。线粒体裂变对线粒体自噬具有正向作用，当归多糖可能是通过抑制小鼠肾脏的线粒体裂变进一步减轻线粒体自噬，两者之间的相互作用还需进一步研究。本研究还存在许多不足，可以在后续研究中，通过体外实验观察当归多糖对 DN 小鼠肾小管上皮细胞的影响及线粒体自噬的动态变化，研究 AMPK 信号通路的其他信号轴及靶蛋白，确定调节线粒体自噬的具体信号通路。通过这些实验，进一步验证当归多糖是否通过体内 AMPK 信号通路调节线粒体自噬，明确当归多糖防治 DN 的具体分子机制。

综上，当归多糖改善了 KK-Ay 小鼠的 DN ，这可能与抑制 AMPK 介导的线粒体自噬有关。本研究揭示了当归多糖对 KK-Ay 小鼠 T2DM 模型中 AMPK 介导的线粒体自噬调节作用。然而，当归多糖如何调节线粒体自噬及线粒体自噬如何促进糖尿病肾病还需要进一步的研究。

利益冲突所有作者均声明不存在利益冲突

参考文献（略）

来 源：王江侠，杨丽霞，米登海，魏瑞贤，崔阳阳，马仙康．当归多糖对糖尿病肾病KK-Ay小鼠肾脏AMPK信号通路及线粒体自噬的影响 [J]. 中草药, 2023, 54(10):3189-3196.

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