该文章于2024年5月7日在Nature Biomedical Engineering上发表,题目为Dendritic-cell-targeting virus-like particles as potent mRNA vaccine carriers,IF为26.8。 全文链接(DOI): 10.1038/s41551-024-01208-4。
摘要
mRNA疫苗对树突状细胞(DCs)的特异性较差,而树突状细胞是最有效的抗原呈递细胞。我们报告了一种设计和性能改进的DC靶向病毒样颗粒,该颗粒以工程化Sindbis病毒糖蛋白为伪型,能够识别DC表面的特定蛋白,并包装了编码严重急性呼吸综合症冠状病毒2型(SARS-CoV-2)刺突蛋白或单纯疱疹病毒1型(HSV-1)糖蛋白B和D的mRNA。将靶向DC的SARS-CoV-2 mRNA疫苗注射到小鼠的足垫中,结果显示相比于未靶向的病毒样颗粒和脂质纳米颗粒制剂,获得了显著更高且持久的抗原特异性免疫球蛋白G(IgG)滴度和细胞免疫反应。这些疫苗还保护了小鼠免受SARS-CoV-2或HSV-1的感染。具有优先被DC摄取的病毒样颗粒可能有助于开发强效的预防性和治疗性疫苗。
结果
这项研究探索了病毒样颗粒(VLPs)作为mRNA疫苗载体的潜力。研究设计了一种候选的SARS-CoV-2 mRNA疫苗,包含全长刺突蛋白mRNA和来自人IgE重链的信号肽,并通过两个脯氨酸替代突变(K986P/V987P)提高了mRNA的稳定性和表达水平。为了将全长刺突蛋白mRNA包装到VLPs中,研究人员在终止密码子和polyA信号之间的3′末端插入了MS2茎环重复序列,这种设计允许mRNA通过与融合到慢病毒GagPol多肽N末端的MS2衣壳蛋白的相互作用被内化。由于水泡性口腔炎病毒G蛋白(VSV-G)包被的慢病毒可被APC有效吸收并产生具有高免疫原性的抗原,VLPs使用了包膜蛋白VSV-G进行伪型化,以增强对抗原呈递细胞(APCs)的摄取能力。通过电子显微镜分析确认了VLPs的形态和大小,并通过RT-qPCR证实了刺突蛋白mRNA的包装效率。RNA免疫沉淀实验显示,含MS2茎环的刺突蛋白mRNA特异性地被MS2衣壳蛋白拉下。进一步分析表明,VLPs中的mRNA不会被逆转录成DNA。Western blotting和共聚焦显微镜分析显示,VLPs成功地将刺突蛋白送入293T细胞,并且突变型刺突蛋白的表达效果优于野生型。对于mRNA的免疫原性测试,VLP载体的mRNA在多种细胞类型中表现出较低的先天免疫反应,这可能是因为该mRNA在细胞内产生并具有类似内源性mRNA的修饰。研究结果表明,VLPs作为mRNA疫苗载体具有潜力,尤其是它们能够低免疫原性地传递抗原mRNA,并有效地将蛋白质递送到目标细胞。
2. 含有突变S mRNA的VLPs诱导强烈和持久的刺突特异性体液应答
补充图:
为评估VLP封装mRNA作为疫苗技术的潜力,对C57BL/6J小鼠(n = 5)进行了免疫接种,使用了含突变刺突蛋白mRNA的p24 VLP(VLP–S-mut),通过脚垫注射。两周后,我们用小鼠血清进行酶联免疫吸附测定(ELISA),发现显著诱导了刺突蛋白特异性的IgG。使用含火荧光素酶的刺突假病毒进行中和实验表明,单次注射VLP–S-mut足以引发强效的中和免疫反应。通过用疫苗接种小鼠的血清预处理Huh-7细胞,几乎完全抑制了绿色荧光蛋白的荧光,而VSV-G假型的慢病毒不受影响。用活SARS-CoV-2进行的中和试验显示抗体中和效价的半最大有效浓度(EC50)为1319。此外,对B.1.617.2变异株伪病毒的中和活性分析显示,其EC50效价较SARS-CoV-2(USA-WA1/2020)变异株稍有下降。短期跟踪实验显示,疫苗接种后第7天开始检测到刺突蛋白特异性IgG,并通过加强针进一步提高了IgG反应。长期跟踪实验表明,单次接种可维持高水平的刺突蛋白特异性IgG反应长达36周。接种后没有显著的体重下降,表明VLP–mRNA疫苗的安全性。此外,鼻用VLP–mRNA疫苗能够在肺部诱导刺突蛋白特异性IgA,提示该疫苗技术可能作为鼻用疫苗来诱导粘膜免疫。通过肽微阵列分析,我们发现接种小鼠的抗体对刺突蛋白的线性表位有不同的识别强度,其中S1域和受体结合域(RBD)抗体的信号明显高于安慰剂组。热图显示,虽然表位高度多样化,但有三个表位(S2-22、S2-76和S2-83)在66.7%的接种小鼠中共享,这些表位也在多数康复小鼠中出现,并且S2-76和S2-83在不同冠状病毒中保守。
3. DVLP–S-mut mRNA在体内引发了增强的免疫反应。
本研究旨在提高病毒样颗粒(VLPs)疫苗的靶向性和免疫效果。为了实现对树突状细胞(DCs)的特异性靶向,我们将工程化的Sindbis病毒糖蛋白(SV-G)应用于VLPs,以取代广泛使用的VSV-G蛋白。通过粒径分析,我们确认SV-G VLPs的尺寸与传统的慢病毒载体相似,并且在SV-G VLPs中平均包含3.5份突变型刺突蛋白(S蛋白)mRNA。体外实验表明,SV-G VLPs能够有效地转导DCs,SV-G VLPs对DCs的转导效率显著高于对HeLa细胞的转导效率,显示出SV-G VLPs对DCs的优良靶向性。此外,与VSV-G VLPs相比,SV-G VLPs在小鼠骨髓来源的DCs(mBMDCs)中的转导效率更高,且引发了更强的CD80/CD86表达,从而促进了T细胞的激活。我们还发现SV-G VLPs具有较低的免疫原性,仅引起轻微的IFNB1表达。为了评估SV-G VLPs在体内的效果,我们将SV-G和VSV-G伪型的VLPs注射到小鼠的足垫中。结果表明,SV-G VLPs引起的淋巴结显著肿胀,表明其增强了DCs向邻近淋巴结的迁移。在体内免疫评估中,SV-G VLPs在诱导抗刺突蛋白IgG和p24特异性IgG方面显著优于VSV-G VLPs。此外,SV-G VLPs在诱导刺突蛋白特异性T细胞应答方面表现更佳,促使产生了显著更高水平的IFN-γ和TNF-α。总之,SV-G VLPs作为靶向DCs的疫苗载体显示了优越的免疫激活能力,表明其在提高疫苗效果和特异性方面具有重要潜力。
4.与LNPs相比,DVLP-S-mut mRNA改善了刺突特异性免疫应答
为了比较DVLP–mRNA疫苗与LNP–mRNA疫苗的免疫反应,我们根据已有文献制备了LNPs,并通过体外转录合成了化学修饰的SARS-CoV-2刺突蛋白编码mRNA,然后将这两种成分结合。研究结果显示,在足垫注射后12天,两种纳米颗粒均显著诱导了特异性抗刺突蛋白的抗体反应,但2μg DVLP的免疫反应明显高于LNP,无论是在2μg还是10μg剂量下。此外,我们还评估了刺突蛋白特异性T细胞免疫反应。结果显示,在疫苗接种后12天,从小鼠脾脏分离的细胞经SARS-CoV-2刺突蛋白肽库刺激后,DVLP–S-mut mRNA组小鼠的IFN-γ、TNF-α和IL-2产生的T细胞数量显著增加。相对而言,非靶向的LNP–mRNA疫苗组的特异性T细胞反应则相对较弱,与之前的研究结果一致。这些结果表明,与LNP–mRNA相比,DVLP–mRNA可能在增强体液和细胞免疫反应方面具有更好的效果。
5. DVLP的生物分布和DC靶向能力的体内表征
补充图:
为了揭示DVLPs性能提升的潜在机制,我们比较了LNPs、VSV-G VLPs和DVLPs在mRNA和蛋白质水平上的表现。研究发现,相较于非特异性的VSV-G VLPs,DVLP递送的刺突蛋白mRNA在足垫疫苗接种后显著富集于淋巴结,尽管两种VLP在注射部位的mRNA量相似。进一步分析显示,DVLP能够在体内有效靶向DCs。在接种后12小时,DVLP组的淋巴结中大多数刺突蛋白和CD11c蛋白信号共定位,表明DVLPs更有效地转导了DCs,而LNP和VSV-G VLP组的CD11c+细胞中刺突蛋白阳性细胞仅占少数。尽管DVLP递送的mRNA在淋巴结的量显著低于LNP递送的mRNA,DVLP组在淋巴结中显示了最多的刺突蛋白阳性细胞。相对而言,在注射部位,所有疫苗处理组的CD11c+细胞数量稀少,且CD11c表达水平较低。综合来看,DVLPs在体内更倾向于转导DCs,并且刺突蛋白加载的DCs能有效迁移到淋巴结。此外,组织病理学分析未发现明显的炎症细胞浸润、细胞坏死或其他组织损伤迹象,且ALT和BUN检测结果表明,LNP、VSV-G VLPs和DVLPs在小鼠体内均无显著系统性毒性。因此,所有测试的疫苗在小鼠体内均显示了良好的生物相容性和耐受性。
6. DVLP-S-mut mRNA疫苗保护hACE2转基因小鼠免受新型冠状病毒病攻击
为评估DVLP–mRNA疫苗对活病毒SARS-CoV-2的保护效果,我们对hACE2转基因小鼠进行了挑战实验。这些小鼠接受了两次1.5μg的p24 VLP–mRNA疫苗注射,随后在加强免疫接种后2周通过鼻内感染105 p.f.u.的SARS-CoV-2病毒。结果显示,接种疫苗的小鼠在第28天时体内检测到了高浓度的中和抗体,其EC50值为2643。接种疫苗的小鼠体重正常增长,而未接种的小鼠体重平均减少了2%。病毒RNA水平分析显示,DVLP疫苗组小鼠的肺部和气管中病毒载量显著降低。免疫荧光显微镜观察发现,疫苗接种小鼠的肺部几乎无法检测到SARS-CoV-2,而对照组小鼠则有明显的病毒存在。组织病理学分析通过HE染色显示,对照组小鼠肺部出现了明显的炎症反应,包括肺泡上皮细胞增生、血管内皮细胞增殖、局部肺泡缩小及炎症细胞浸润。相对而言,接种疫苗的小鼠炎症反应明显减轻,仅在极少数区域观察到轻微的炎症细胞浸润。这些结果表明,DVLP–mRNA疫苗能够有效保护小鼠免受活病毒SARS-CoV-2感染,并有效预防了挑战后的炎症反应。
7. DVLP包裹的gB1-gD1 mRNA疫苗保护小鼠免受HSV-1攻击
为了探讨DVLP作为疫苗平台的多样性,研究人员开发了一种HSV-1 mRNA疫苗,该疫苗利用SV-G伪病毒样颗粒(VLPs)传递HSV-1的gB1和gD1 mRNA。在完成基础免疫和加强免疫后,剃毛小鼠接受了HSV-1挑战。疫苗显著诱导了针对HSV-1的中和IgG,且加强免疫后抗体水平进一步提高。值得注意的是,该疫苗还表现出对HSV-2的交叉中和活性。接种疫苗的小鼠未出现严重的疾病症状或病变,而对照组小鼠则表现出明显的疾病进展。病毒载量分析显示,接种疫苗的小鼠皮肤中的HSV-1显著减少,且在背根神经节中的HSV-1水平几乎不可检测,表明疫苗提供了强有力的保护。组织学检查显示,接种疫苗的小鼠皮肤组织结构保持良好,而未接种疫苗的小鼠则皮肤真皮和表皮严重受损。免疫组织化学分析显示,未接种疫苗的小鼠皮肤中有明显的免疫反应,包括CD4+ T细胞和中性粒细胞浸润,而这些在接种疫苗的小鼠中并未观察到。这些结果确认了DVLP–mRNA疫苗在防护HSV-1感染和组织损伤方面的有效性。
总结与展望
针对 HSV-1、HSV-2、HIV 以及癌症等病毒感染的有效疫苗仍然是一个重大未满足的需求。树突状细胞(DCs)在诱导强而持久的 T 细胞和体液免疫反应中至关重要。传统的 mRNA 疫苗使用脂质纳米颗粒(LNPs),这些颗粒被多种细胞类型,包括 DCs,被动摄取。相比之下,这项研究提出了一种新方法,通过使用 VLPs 特异性地将 mRNA 疫苗靶向到 DCs,从而显著增强了体液免疫和 T 细胞反应,相较于非特异性疫苗效果更佳。这种 DVLP–mRNA 疫苗技术在 SARS-CoV-2 和 HSV-1 模型中显示了保护病毒感染的潜力。DVLPs 来源于 IDLVs,后者以其强大的免疫反应和低炎症特性而闻名,DVLPs 的优势在于避免了插入突变的风险,并且逃避了 SAMHD1 的负调控。这种靶向 DCs 的递送方法可能会提高疫苗的效力,是开发针对既有感染和癌症疫苗的有前景策略。基于DVLP的mRNA疫苗的未来应用包括原位DC疫苗,以治愈癌症或去除已建立的病毒感染,并有望与免疫检查点抑制剂联合使用。此外,DVLP–mRNA疫苗的效力可以通过使用环状RNA或自扩增RNA进一步提高,这可以提高疫苗的效力、延长抗原表达时间并降低成本。
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撰写| 药时空
校稿| Gddra编审| Hide / Blue sea
编辑 设计| Alice
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