“如果地球是一家企业,二氧化碳就是它的开支,而碳固定就是它的收入。” 眼下,这笔“碳账”严重亏空。每年人类排放的二氧化碳远超自然界的固定能力,全球变暖、能源危机迫在眉睫。

甲酸、二氧化碳等 C1 化合物因其可再生、低成本的特点,被视为未来生物制造的关键碳源。但要让微生物高效利用它们,传统天然碳固定途径却成为瓶颈。卡尔文循环是生物界最常见的固碳途径,但效率受限。

此前,马克斯普朗克陆地微生物研究所Tobias Erb及其同事开发了人工固碳途径,例如 CETCH 和 THETA 循环,其效率优于天然卡尔文循环。这些途径已经在体外取得成功,但仅部分整合到生物体中。

他们研究的另一种固碳方法涉及物理化学方法,例如使用可再生能源将 CO₂ 电化学还原为甲酸,然后再用微生物将其转化为各种产品。因此,研究人员目前正在开发混合技术,首先将 CO₂ 物理化学固定为甲酸,然后进一步通过微生物加工。

许多细菌都通过卡尔文循环自然转化甲酸,该团队近日测试了比卡尔文循环更节能的还原性甘氨酸途径(rGlyP),后者是处理甲酸最有效的合成代谢途径。

研究发现,整合了 rGlyP 途径的工程菌株的生物量产量比野生型高 17%,产量高于使用卡尔文循环的任何天然形态营养菌。这表明合成代谢具有实现可持续生物基生产的潜力。这一研究成果以“One-carbon fixation via the synthetic reductive glycine pathway exceeds yield of the Calvin cycle”为题发表在 Nature Microbiology。

在这项研究中,团队选用了 Cupriavidus necator 菌株,这种细菌自然地使用卡尔文循环来代谢甲酸。早在 2020 年,该团队的一位合作者、来自瓦赫宁根大学的 Nico Claassens 已经成功地将还原性甘氨酸途径引入 Cupriavidus necator。但由此产生的生长率和生物量产量低于未改造的细菌。

在这项新研究中,研究人员将完整的还原性甘氨酸途径(rGlyP)整合到细菌基因组中,并系统性优化其效率。该途径包含三个关键模块:C1 模块通过甲酸-四氢叶酸连接酶(FtfL)激活甲酸,再经亚甲基四氢叶酸环化酶(FchA)和脱氢酶(MtdA)生成亚甲基四氢叶酸;C2 模块利用甘氨酸裂解系统(GCS)逆向结合 CO₂ 生成甘氨酸,绕过高能耗的卡尔文循环C3 模块则通过丝氨酸羟甲基转移酶(GlyA)和脱氨酶(SdaA)将甘氨酸转化为丙酮酸——这一系列反应最终生成丙酮酸,为细胞生长提供核心碳骨架。

研究团队选择工业常用菌株 Cupriavidus necator H16(天然依赖卡尔文循环)作为底盘,并通过基因敲除技术去除其聚羟基丁酸合成基因(ΔphaC1),获得代谢背景清晰的工程菌株 H16 ΔphaC1。随后,他们将 rGlyP 的 C1 和 C3 模块从原始质粒系统中分离,分步整合至细菌基因组:首先利用 Tn5 转座子技术将 C1 模块随机插入基因组,通过多轮甲酸培养基传代筛选出生长最快的菌株;在此基础上,再次使用相同策略整合 C3 模块,最终获得完全基因组整合的菌株 CRG6。

为减少代谢分流,团队进一步敲除甘氨酸氧化酶基因(ΔdadA6),迫使碳流集中于 rGlyP。蛋白质组学分析表明,基因组整合使 rGlyP 相关蛋白表达量降低 13%,释放的细胞资源被重新分配至核糖体合成等生长必需功能。经过优化的 CRG6 菌株在甲酸培养基中的生物量产率达到 4.52 g CDW/mol,较野生型提升 17%,且碳损失减少至 11%,展现出显著的代谢效率优势。

本研究通过合成代谢途径的理性设计与基因组整合,首次在工业微生物中实现了对天然碳固定系统的全面超越。其核心价值不仅体现在 17% 的甲酸利用效率提升,更在于构建了可扩展的“碳-能耦合”范式——利用电化学还原 CO₂ 生成的甲酸,经 rGlyP 驱动的高效同化,可闭环生产生物塑料(如 PHB)、微生物蛋白及 C4-C6 液态燃料,减少对石油基原料的依赖。这一技术框架展现出显著的跨界潜力。

学界评价此研究为“合成生物学里程碑”(Sarwar & Lee, 2025),其意义在于证明人工代谢网络可突破自然进化约束,而未来研究需聚焦“将理论优势转化为工业竞争力”——正如评述所言:“让细菌工厂不仅更‘聪明’,还要更‘勤奋’。”

1.Dronsella, B., Orsi, E., Schulz-Mirbach, H. et al. One-carbon fixation via the synthetic reductive glycine pathway exceeds yield of the Calvin cycle. Nat Microbiol (2025).

2.Sarwar, A., Lee, E.Y. Surpassing natural limits in one-carbon assimilation. Nat Microbiol (2025).

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