聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）是生物化学、分子生物学、医学及生物技术领域中，分离蛋白质与寡核苷酸的核心实验技术。一方面，它凭借稳定的分离效果成为实验室标配方法；另一方面，实验结果的分辨率、重复性与数据可靠性，又高度依赖 PAGE 凝胶的品质与实验者的选型策略。作为长期做蛋白电泳的实验研究者，今天就结合自己的实操经验，系统梳理一下 PAGE 凝胶的原理与分类、不同浓度胶对应的蛋白分离范围，同时对比几款主流商品化 PAGE 凝胶的实际性能，希望能为大家在实验选型时提供一份清晰、实用的参考依据。
一、PAGE 凝胶的工作原理与分类
PAGE 凝胶由丙烯酰胺单体与交联剂亚甲基双丙烯酰胺，在催化剂与加速剂作用下聚合形成三维网状结构。与此同时，它还具备孔径可调、分辨率高、化学稳定、重复性好、操作简便等多重优势，所以被广泛用于蛋白与核酸分离。其核心分离机制为分子筛效应，根据实验需求与处理方式不同，主要分为以下两类：
1、非变性 PAGE（Native‑PAGE）
在此类电泳中，蛋白质能够保持天然完整构象，不仅不会发生变性，还能保留原有生物活性。因此，其分离依据同时取决于分子量、分子形状与表面电荷量三个因素，最终条带可反映蛋白天然状态与复合物信息。
2、变性 PAGE（SDS‑PAGE）
这类电泳会加入阴离子去污剂 SDS，一方面使蛋白变性解聚，另一方面赋予蛋白均匀负电荷。如此一来，就能消除电荷与构象差异，让分离仅由分子量决定，这也是当前蛋白分析最常用的电泳形式。在电场作用下，带负电的蛋白向正极迁移，小分子迁移速度快、大分子迁移速度慢，进而实现精准的分子量分离。
二、PAGE 胶浓度与蛋白分离范围匹配
凝胶浓度指分离胶中丙烯酰胺总浓度，这个参数直接决定凝胶孔径大小，是影响分离效果的关键因素。具体来说，浓度越高、孔径越小，越适合分离小分子蛋白；反之，浓度越低、孔径越大，越适合分离大分子蛋白。
基于这一规律，常用分离胶浓度与最佳分离范围如下：
6% 胶：适合 40–250 kDa 大分子蛋白
8% 胶：适合 20–200 kDa 中大分子蛋白
10% 胶：适合 13–100 kDa 中分子量蛋白
12% 胶：适合 10–60 kDa 中小分子蛋白
15% 胶：适合 ＜40 kDa 小分子蛋白
综上，在开展 SDS‑PAGE 检测前，应先预估目标蛋白分子量，再选择对应浓度凝胶；若无法预知分子量，则优先选用分离范围宽的浓度，电泳后再通过凝胶成像系统计算蛋白分子量与纯度。
三、主流 PAGE 凝胶产品性能对比
目前市面上 PAGE 凝胶试剂盒种类繁多、品质参差不齐，因此很多实验者在选型时常常陷入困惑。我们从中筛选出研究者用的最多的两款PAGE凝胶产品来进行性能比较实验，一款为国内知名品牌E的10%一步法PAGE凝胶快速制备试剂盒，一款为BIOG的10%一步法PAGE彩色凝胶快速配制试剂盒，并且严格按照说明书制胶，在 150 V 相同电压下开展电泳测试。
1. 预染 Marker 电泳对比
首先对比预染 Marker 的分离效果，BIOG 凝胶仅需电泳 35 min，就能完成蛋白全组分分离，就连 8 kDa 的小分子条带也清晰可辨；而品牌 E 凝胶即便延长电泳时间至 45 min，小分子蛋白仍未实现有效分离。究其原因，BIOG 凝胶采用了专研 DonGel 技术，不仅显著提升了小分子蛋白分辨率，还让电泳时间缩短 20% 以上，大幅提高了实验效率。
2. 真实蛋白样本电泳对比
为了进一步验证实际应用效果，我们以 Hela 细胞蛋白为样本，分别上样 10 μL、15 μL、30 μL 进行电泳。结果显示，BIOG 凝胶电泳 40 min 即可完全分离 Marker，条带笔直、锐利、无弯曲，即便上样量达到 30 μL 也无条带外扩；与之相对，品牌 E 凝胶电泳 50 min 后，8 kDa 与 13 kDa Marker 仍未分开，高上样量时还出现明显泳道外扩与 “波浪形” 变形。除此之外，BIOG 凝胶可分离出更多相近分子量条带，对复杂蛋白样本的分辨能力更优。
综合以上分析，选择 PAGE 凝胶需要遵循两大核心原则，即按目标蛋白分子量选浓度，按实验需求选品牌。具体而言，若只是进行常规蛋白分离，品牌 E 可满足基础实验要求；但如果需要检测小分子蛋白、追求高分辨率条带、分析复杂样本，或是希望缩短实验时长，就优先选择 BIOG 这类高性能凝胶。因为它不仅能满足多蛋白条带分离和小分子蛋白检测的需求，还能节省电泳时间，最终全面提升蛋白电泳实验的质量与效率。
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