作者:宠物医师网编委会
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前言
静脉(IV)导管(也称"留置针")是临床中连接患宠血管系统的重要通道,用于输注液体、血液制品或药物,也可以方便多次采血,减少患宠的痛苦。
对于静脉条件不佳或需要反复采血的患宠,静脉导管也能帮上大忙。
但是,导管直接进入血管,一旦操作或护理不当,就可能引发感染等严重并发症。
今天我们从选静脉、选导管尺寸、无菌准备、助手配合到固定与护理,一步步拆解静脉导管置入的关键要点。
核心原则:无菌操作
由于导管是直接引入静脉系统,每次放置都必须严格遵循无菌操作技术,即使只是短期留置。
置管前 或者协助置管前, 一定要洗手 , 操作中始终使用无菌技术 。
外周静脉导管置入操作步骤
1. 选择合适的静脉
犬猫最常用的外周留置部位:
前肢:头静脉(最常用)
后肢:外侧隐静脉(常用)
其他可选:副头静脉、内侧隐静脉等
选择静脉时还要考虑患宠的状态和住院原因:
如果患宠即将进行右前肢手术→ 不要选右前肢置管
如果患宠呕吐→ 隐静脉更容易保持清洁干燥
如果患宠腹泻→ 头静脉更合适
多想一想,能让自己后面几天的工作轻松不少~
2. 导管尺寸
不是越大越好,有些人习惯“能大则大”,也有人不管患宠大小都用 22G。
实际上,您需要的是在能顺利置入的前提下,选择满足治疗需求的最大尺寸。不大不小,刚好合适。如果导管太粗,可能会堵塞静脉甚至造成创伤。
多数犬:20G
大型犬:18G
猫:22G 通常足够
长度:长导管更稳定,但不宜过长。例如在腊肠犬的“小短腿”上,如果使用过长的导管输液泵会频繁报警。
如果您需要高速率输注液体,应选用更大内径的导管,您的输液泵也会更安静!
3. 皮肤与人员准备
导管是直接通向血液的“门户”,皮肤准备绝不能马虎。
剃毛范围要足够大:包括整个导管、所有连接部位以及穿刺点,都要无毛。
所有静脉导管的置入都应使用与我们外科手术相同的皮肤准备技术。接触时间与外科皮肤准备同样重要。用氯己定/酒精快速擦拭一下是远远不够的。
有研究显示,导管相关感染在兽医重症监护患宠中的发生率约为25%[3],在普通临床环境住院患宠中约为15%[4]。
为您的安全考虑,您还应佩戴检查手套,因为您会接触血液,至少要戴到导管置入并用肝素帽封住导管座为止。如果没有过多血液,您可以脱掉手套来粘贴胶带。
静脉导管应始终位于剃毛区域内,以帮助预防污染。白线标示剃毛区域,蓝色箭头指向静脉导管的末端。
4. 助手与操作者一样重要
如果您被要求协助置管,作为助手帮忙固定患宠,你的角色非常关键:
让患宠保持胸卧姿势,伸出将要置管的肢体,通过从内向外侧滚动拇指,使静脉隆起(必要时可使用止血带)
置管成功后,您需要“按住导管”:用拇指放在导管的末端(不是穿刺点!),防止血液到处流,同时让操作者可以连接输液装置并进行固定。
5. 置管操作要点
助手让静脉隆起
将导管刺入静脉,直到在针芯中看到血液回流
将导管与针芯一起再稍微推进一点(这一步很关键)
固定针芯不动,向前推送导管
助手立刻“按住”导管末端
连接 IV 注射端口或输液装置
常见错误提醒:
不要一见回血就立即推管,此时导管尖端可能还在静脉外
不能用指甲抵住导管座末端将其“弹”进去,这会污染导管,应小心捏住导管座两侧推进导管
在导管末端进行按压,可防止穿刺点受到污染。在穿刺点处按压会污染已无菌准备的区域,并可能导致导管部位感染。
6. 固定与冲洗
有各种各样不同的胶带固定方法。无论您选择哪种方法,都必须做到两件事:
牢固:不能移动、扭转或脱落
可移除:不至于难撕到让动物痛苦
推荐做法:
使用宽度合适的弹性胶带
第一条胶带从导管座下方穿过,绕肢体一圈并压住导管。
第二条胶带可做成 V 形放在导管下方,增加侧向稳定
在完全固定前,先冲洗导管检查通畅性,确认无误后再完成全部固定,再用一条胶带固定导管座和注射端口或输液装置。
透明薄膜敷料:虽然常规置管不常用,但有充分证据表明,使用透明薄膜敷料可显著降低并发症发生率。如果你愿意,可以在固定阶段使用。
7. 保护穿刺部位
对于短期留置(例如 1 天左右)的导管:用骨科垫棉从爪部到导管上方缠绕整个肢体。
外层用自粘绷带包裹,露出注射端口,方便随时使用,使用特定作为“有导管”的统一标识色,可以提醒所有同事:这只有导管,避免意外拔除。
导管可以留置多久?
原则上,只要功能正常、没有并发症,就可以继续使用。很多诊所习惯每 3 天更换一次,但这也可能导致因不必要的额外置管而在静脉中造成更多瘢痕、给患宠带来额外不适,也不必要地频繁更换导管,这会增加静脉瘢痕、患宠痛苦和费用。
一项人类医学研究表明,作为降低静脉炎和菌血症等风险的措施,每72至96小时更换导管并没有额外益处[6]。
导管功能异常应拔除导管:
输液时出现疼痛或阻力
出现不明原因发热
出现蜂窝织炎、血栓性静脉炎
怀疑导管相关的菌血症或败血症
扫码查看,放置静脉导管时的情况
参考文献
1.Catheters: a review of the selection, utilisation and complications of catheters for peripheral venous access. Tan RHH, Dart AJ, Dowling BA. Australian Veterinary Journal Volume 81, Issue 3, pages 136–139, March 2003
2.The efficacy of chlorhexidine gluconate in canine skin preparation – practice survey and clinical trials. Evans LKM, Knowles TG, Werrett G, Holt PE. Journal of Small Animal Practice. Volume 50, Issue 9, pages 458–465, September 2009
3.Surveillance of infections associated with intravenous catheters in dogs and cats in an intensive care unit. Marsh-Ng, M. L., Burney, D. P. & Garcia, J. Journal of the American Animal Hospital Association 2007: Vol 43, pgs. 13–20
4.Bacterial and fungal colonisation of peripheral intravenous catheters in dogs and cats. Seguela J, Pages J-P. Journal of Small Animal Practice. Volume 52, Issue 10, pages 531–535, October 2011
5.Effectiveness of transparent film dressing for peripheral intravenous catheter. Atay S, Yilmaz Kurt F. Journal of Vascular Access 2021. Volume 22, Issue 1, pages 135-140
6.Clinically-indicated replacement versus routine replacement of peripheral venous catheters. Webster J, Osborne S, Rickard C, Hall J. Cochrane Database of Systematic Reviews 2010, Issue 3. Art. No.: CD007798.
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