本试剂盒用于检测鸡样本(如血清、血浆或细胞培养上清)中免疫球蛋白G(IgG)的浓度。研究者可使用该试剂盒分析鸡机体免疫系统状态,为免疫机制研究或疫苗免疫效果评估提供关键数据支持。

2. 检测原理

试剂盒采用双抗体夹心法酶联免疫吸附试验(ELISA)原理:

  1. 酶标板预包被抗鸡IgG抗体,用于特异性识别样本中的IgG。
  2. 样本或标准品中的IgG与酶标板上的抗体结合。
  3. 酶标二抗(HRP标记)与IgG结合,形成抗体-抗原-抗体复合物。
  4. 加入显色底物TMB后,发生酶促反应,显蓝色。
  5. 终止液加入后,溶液变黄色,于450 nm处测定光密度(OD值),通过与标准曲线比较定量IgG浓度。
二、试剂盒组成

组分规格(96T)说明酶标板1块96孔板,预包被抗鸡IgG抗体标准品(鸡IgG标准浓度)6支配制标准曲线,稀释范围:0-2000ng/mL样本稀释液1瓶稀释样本使用酶标二抗(HRP标记)1瓶与IgG复合物结合,产生信号浓缩洗涤液(20×)1瓶配制洗涤工作液显色液(TMB)1瓶显示颜色,避免阳光直射终止液1瓶终止显色反应,溶液化为黄色说明书1份详细操作指南

三、样本要求

  1. 样本类型

    1. 鸡血清、血浆、或细胞培养上清液均可用于检测。
  2. 样本采集与保存

    1. 血清或血浆样本分离后应立即冷冻(-20 或 -80℃),避免反复冻融;细胞培养上清应去除颗粒杂质后保存。
  3. 样本稀释

    1. 样本稀释倍数因IgG浓度不同而有所差异,建议预先优化稀释比例。推荐起始稀释比例为 1:10-1:100,视样本浓度调整。
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四、操作步骤1. 试剂准备
  1. 将试剂盒中的所有试剂和样本从冰箱中取出,室温平衡20-30分钟。
  2. 用去离子水或蒸馏水按1:20比例稀释浓缩洗涤液,配制成工作液。
2. 标准曲线制备

按照说明书要求稀释标准品。推荐标准品稀释浓度范围:2000 ng/mL、1000 ng/mL、500 ng/mL、250 ng/mL、125 ng/mL、62.5 ng/mL、0 ng/mL(空白孔)。

3. 加样

  1. 标准品:依次向酶标板对应的标准孔中加入50 µL的不同浓度标准品。
  2. 样本:向检测孔加入50 µL稀释后的样本。
  3. 阴性对照:向空白对照孔加入50 µL的样本稀释液。
  4. 轻拍酶标板,确保加样均匀。
4. 孵育

盖上封板膜,将酶标板置于37℃恒温箱中孵育30分钟。

5. 洗板(共洗5次)

  1. 去除孔内液体(注意不要形成气泡或溅洒)。
  2. 每孔加入200 µL稀释好的洗涤液,停留10秒后去除液体。
  3. 用吸水纸轻轻拍干残余液体。
6. 加酶标二抗

每孔加入50 µL HRP标记的酶标二抗,盖上封板膜,再次37℃恒温孵育30分钟。

7. 重复洗板

按照第5步,洗板5次以清除未结合酶标二抗。

8. 显色

  1. 每孔加入50 µL TMB显色液,避光静置反应10-15分钟,观察颜色变化。
  2. 一旦颜色适宜(浅蓝至深蓝),尽快加入终止液。
9. 终止反应

每孔加入50 µL终止液,溶液颜色由蓝色转为黄色,立即用酶标仪测定。

10. 检测与计算

在酶标仪上设置450 nm波长,读取各孔OD值。使用标准品绘制标准曲线,通过线性拟合计算样本IgG浓度。

五、注意事项

  1. 标准品、样本及试剂应按要求稀释至合适浓度,避免因浓度过高或过低导致误差。
  2. 洗板时尽量避免气泡或孔干,确保清洗充分,减少背景干扰。
  3. 显色反应控制在10-15分钟,防止过度显色影响结果。
  4. 酶标仪检测前确保显色反应终止,未及时终止可能导致数据误差。
  5. 操作过程中应保持试剂无污染,避免重复使用移液器或稀释液瓶。
六、结果判定

通过绘制标准曲线,计算样本对应的IgG浓度,结果单位为ng/mL。若样本浓度超出标准曲线范围,应对样本进行进一步稀释后重新检测。

七、储存与有效期

  1. 储存条件

    1. 未开封的试剂盒应储存于2-8℃,切勿冷冻。
    2. 开封后未使用完的试剂需重新密封保存。
  2. 有效期

    1. 产品有效期详见试剂盒外包装标签,建议在有效期内使用完毕。

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