龙眼(Dimocarpus longan Lour.)是我国南方地区主要经济作物之一,有着悠久的种植历史。龙眼的干制通常需要加热,在这个热加工过程中会发生非酶促褐变——美拉德反应和糖类脱水反应生成5-羟甲基糠醛(5-HMF),储藏过程中也会由于美拉德反应进一步产生5-HMF。除了作为食品风味的重要成分外,5-HMF还是评价食品安全性的重要指标。
福州大学至诚学院的方榕辉和生物科学与工程学院的桑婉婧、刘树滔*等 为探讨5-HMF在干制和长期储存过程中的变化规律,以及它在消化吸收过程中安全性受到的影响,本实验探究龙眼干中5-HMF在干制、长期储存、体外模拟消化过程中的含量变化规律,以及龙眼干共存组分对5-HMF的细胞毒性的影响,以期从5-HMF的角度为龙眼干的食用安全性、生产工艺和储存方式的优化提供依据。
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干制温度对5-HMF含量及相关指标的影响
1.1 干制温度对龙眼干中5-HMF含量的影响
新鲜龙眼中未检出5-HMF,由图1可知,龙眼干中5-HMF的含量随着干制温度的升高逐渐增加。在干制温度65~75 ℃时,5-HMF含量增加不明显;但在80~90 ℃时,5-HMF随温度升高而显著增加。例如,在烘焙温度为75 ℃时,乌龙岭5-HMF含量为4.4 mg/kg,油谭本5-HMF含量为0.7 mg/kg;而在90 ℃时,乌龙岭和油谭本中5-HMF含量达到最高,分别为623.8 mg/kg和322 mg/kg。因此,当加工温度高于80 ℃时,龙眼干中的5-HMF会出现大幅度增加,且5-HMF含量上升速率随着干制温度的升高而加快。
1.2 干制温度对龙眼干褐变度的影响
如图2所示,经过干制后,乌龙岭的褐变度在温度为65~75 ℃时未见显著差异,但当温度超过80 ℃时,褐变度开始显著升高;而油谭本的褐变度则随着温度升高不断增加,其中在温度分别达到85 ℃和90 ℃时,褐变度较80 ℃时分别上升了68.2%和110.2%,变化尤为剧烈。这是因为高温环境下,龙眼中的果糖和葡萄糖会与氨基酸反应形成黑色素,导致龙眼的褐变度上升。
1.3 干制温度对龙眼干中还原糖含量的影响
果糖比葡萄糖更容易发生脱水反应生成5-HMF。采用HPLC-RID检测方法对龙眼干进行分析,结果表明样品中含有3 种糖:蔗糖、果糖和葡萄糖。其中果糖和葡萄糖是还原糖,其含量如图3所示。当干制温度超过80 ℃时,果糖和葡萄糖的含量显著下降(P<0.05)。
1.4 干制温度对龙眼干中总游离氨基酸含量的影响
干制过程中的高温会导致龙眼干中游离氨基酸含量变化,由水分蒸发和蛋白质降解引起。游离氨基酸参与美拉德反应等化学反应,可以缩合聚集或生成挥发性成分,从而降低龙眼干中游离氨基酸含量。根据图4,龙眼干中总游离氨基酸含量总体上随干制温度的上升而下降。干制温度升高到85 ℃以上时,龙眼干中总游离氨基酸含量下降幅度明显增大,与干制温度80 ℃相比,90 ℃时乌龙岭和油谭本中总游离氨基酸含量分别下降59.7%和42.9%。
1.5 干制温度对龙眼干中总酸含量的影响
由图5可知,两种龙眼干中的总酸含量均随着干制温度的上升而逐渐上升。干制温度低于85 ℃时,总酸含量不超过1.0 g/kg;干制温度80 ℃和85 ℃条件下的龙眼干总酸含量差异不显著;干制温度90 ℃时,乌龙岭总酸含量为1.41 g/kg、油谭本总酸含量为1.33 g/kg,与其他干制温度龙眼干的总酸含量有显著差异(P<0.05)。
1.6 龙眼干中5-HMF与其他指标的相关性分析
将不同干制温度下龙眼干中5-HMF与其他理化指标作相关性分析,两种龙眼干的5-HMF与还原糖、总酸、褐变度、总游离氨基酸含量的Spearman相关系数见表1。虽然龙眼干中5-HMF与还原糖呈现负相关趋势,但二者之间的相关性并不显著。5-HMF与总酸、褐变度均呈极显著正相关(P<0.01)。5-HMF与总游离氨基酸含量呈显著负相关(乌龙岭P<0.01,油谭本P<0.05),总游离氨基酸含量随5-HMF的积累而下降。
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龙眼干长期储存过程中5-HMF含量的变化
如图6所示,龙眼干在初始状态下5-HMF含量较低,乌龙岭为0.49 mg/kg,油谭本为0.29 mg/kg。随着储存时间的延长,各组龙眼干中5-HMF含量先增加后降低。各温度下两种龙眼干在储存的第1个月5-HMF含量均出现明显上升。在25 ℃常温储存下,乌龙岭和油谭本中的5-HMF均在储存1 个月后达到峰值,分别为14.68 mg/kg和4.43 mg/kg,并在储存第3个月后开始出现显著下降;在4 ℃冷藏条件下,两种龙眼干均在储存3 个月后含量达到最高,分别为22.43 mg/kg和9.35 mg/kg;在37 ℃高温储存下,乌龙岭在储存5 个月后到达峰值16.04 mg/kg并下降,油谭本在储存7 个月到达峰值11.96 mg/kg并下降。在储存前期,糖类热降解产生5-HMF的速度更快,5-HMF快速积累。储存后期5-HMF含量呈下降状态可能是由于5-HMF进一步反应而产生糖基化终末产物。综上所述,龙眼干在25 ℃条件下储存5-HMF整体含量较低,且最短时间内开始下降。因此,从控制5-HMF含量的角度来看,25 ℃常温储存是龙眼干的相对最佳储存条件。
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龙眼干中5-HMF在体外模拟消化过程中的变化
为探讨5-HMF在消化道代谢过程中的动力学过程,进行了体外模拟消化实验。由图7可知,两种龙眼干中,乌龙岭的5-HMF含量高于油谭本。经口腔模拟消化后,两种龙眼干中的5-HMF含量显著增加(P<0.05)。但胃消化后,5-HMF含量在两种龙眼干中均显著下降(P<0.05)。随着进一步肠道模拟消化的进行,5-HMF含量在两种龙眼干中进一步显著下降(P<0.05)。
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龙眼干水提液对Caco-2细胞的影响及其对5-HMF细胞毒性的抵消作用
4.1 龙眼干水提液对细胞增殖活性影响
不同质量浓度的龙眼干水提液作用于Caco-2细胞24 h后的细胞存活率如图8所示。添加龙眼干水提液后,Caco-2细胞存活率显著上升(P<0.05),但随着水提液质量浓度的增加,Caco-2细胞存活率虽有增加但变化不显著。结果表明,在0~10 mg/mL范围内两种龙眼干水提液对Caco-2细胞的增殖均有促进作用。
4.2 龙眼干水提液对5-HMF细胞毒性的抵消作用
根据图8的结果,选择总体上对Caco-2细胞增殖效果更好的8 mg/mL的龙眼干水提液,探究龙眼干水提液对5-HMF的Caco-2细胞毒性的抵消作用,结果如图9所示。5-HMF对Caco-2细胞增殖的抑制作用随着作用浓度的增加而增强;两种龙眼干水提液对5-HMF的Caco-2细胞毒性有一定抵消作用,其中油谭本作用下的细胞存活率更高,对5-HMF的细胞毒性抵消作用更强。在固定质量浓度的龙眼干水提液作用下,随着5-HMF浓度的增高,其毒性抵消作用逐渐下降,达到48 mmol/L时由于浓度过高而失去作用。该结果表明,龙眼干本身内含的其他化学成分对0~24 mmol/L的5-HMF细胞毒性有抵消作用。
4.3 龙眼水提液对5-HMF细胞吸收能力的影响
在Caco-2细胞培养液中加入不同浓度范围(0.5~8 mmol/L)的5-HMF和含相同浓度5-HMF的龙眼干水提液,培养120 min后测定细胞5-HMF的吸收情况。由图10a可知,在5-HMF给药浓度为0.5~8 mmol/L时,Caco-2细胞对其吸收量随给药浓度增大而增大,且没有达到饱和。由图10b可知,在浓度为0.5 mmol/L时,Caco-2细胞对5-HMF的吸收率最大,为52.09%。但高浓度的5-HMF可能阻碍了细胞的吸收,使得吸收率降低。添加龙眼干水提液后,在浓度为2 mmol/L和4 mmol/L时其吸收量和吸收率显著降低。综上所述,龙眼干水提液对Caco-2细胞吸收浓度在2~4 mmol/L范围内的5-HMF有良好的抑制作用。
本实验首先探讨了干制温度对龙眼干中5-HMF的影响,发现干制温度升高会导致龙眼干中5-HMF的含量增加,且上升速率随干制温度的升高而加快。在65~75 ℃条件下干制时,产生5-HMF的含量较低,当提升烘焙温度为90 ℃时,乌龙岭和油谭本中5-HMF含量均达到最高,分别为623.8 mg/kg和322 mg/kg。因此,在龙眼干生产中,应尽可能降低干制温度。此外,数据表明随着加工温度的上升,还原糖的含量与5-HMF之间存在负相关,这主要是由于在高温加热条件下加速了美拉德反应和果糖脱水反应,使龙眼干中还原糖被快速消耗,同时促进了5-HMF的生成,这种现象也可以说明5-HMF的生成途径通常需要消耗还原糖,但5-HMF含量与龙眼干中还原糖含量相关性不显著,推测由于龙眼干中糖分含量很高,使得还原糖变化量在总量上所占比例相对较低。
此外,本研究数据表明pH值是影响5-HMF形成的重要因素,与先前研究中观察到的现象相符。例如曾世通等研究美拉德反应体系中5-HMF的形成规律表明,酸性条件可以促进5-HMF的形成,而碱性条件则抑制其形成。本研究观测到高温下5-HMF含量的增加也可能与pH值有关,因美拉德反应的进行会使反应体系的酸度逐渐增加,从而可加快5-HMF的产生速度,该机制可解释5-HMF与总酸呈极显著正相关(P<0.01)的实验现象。结果表明随着5-HMF的累积,总游离氨基酸的含量逐渐降低,且呈显著负相关,这可能是因为游离氨基酸能够与碳水化合物反应产生5-HMF,证明此过程有美拉德反应的参与。
冷藏(4 ℃)、常温(25 ℃)、高温(37 ℃)3 种条件下长期储存过程中,5-HMF含量在储存前期逐渐增多,各温度下储存的第1个月均出现明显上升。不同储存条件使5-HMF含量在不同时间点达到峰值,并在达到峰值后开始下降,表明储存温度可影响5-HMF的生成/降解反应速率。
与此相符,本研究数据表明龙眼干中的5-HMF会随着模拟口腔消化而暂时增加,但经过胃、肠消化后,其含量显著降低。据此可知,在口腔中咀嚼时,因龙眼干结构破坏,能够释放出5-HMF,但口腔中的唾液仅含淀粉酶且pH值近中性,消化能力较弱,推测其不能作用于5-HMF;而在胃和肠道模拟消化过程中,5-HMF含量不断降低,被大量消耗。胃肠中含多种消化酶尤其是蛋白酶,如胃蛋白酶,胰蛋白酶、肽酶等,推测龙眼干中的蛋白质在胃和肠道消化过程中被酶解,产生的游离氨基酸与5-HMF反应形成加合物,从而降低了5-HMF含量。此外,胃酸为强酸性,对有机物的水解也具有促进作用。
结论
研究结果表明,干制温度升高会导致龙眼干中5-HMF的含量增加,且上升速率随干制温度的升高而加快。不同加工温度下,还原糖含量、总游离氨基酸含量与5-HMF之间存在负相关;总酸含量、褐变度与5-HMF含量呈正相关,这些数据为揭示龙眼干加工过程中5-HMF的来源提供了参考。通过评估冷藏(4 ℃)、常温(25 ℃)、高温(37 ℃)3 种储存条件,发现5-HMF含量随储存时间延长呈现先增加再下降的过程;比较实验表明25 ℃为龙眼干储存的最适温度,可使5-HMF最快达到峰值后下降,从而降低其整体含量。体外消化模拟实验表明龙眼干中的5-HMF在口腔消化过程中可暂时增加,但经胃、肠消化后含量显著降低。细胞学实验表明龙眼干水提液能促进Caco-2细胞的增殖,减少细胞对5-HMF的吸收,并可抵消5-HMF的细胞毒性。本研究实验数据为探讨龙眼干5-HMF形成的精细化学机制提供了参考,也对5-HMF的吸收和细胞毒性进行了初步评估,对后续研究优化龙眼干加工储存工艺有重要意义。
作者简介
通信作者:
刘树滔教授,福州大学生物工程研究所所长、至诚学院食品与生物工程系主任。兼任福建省食品科学技术学会副理事长、福建省工信厅食品生物技术行业技术开发基地主任。
学习、工作经历:
1992年7月,福州大学食品工程专业,工学学士;2001年3月,日本国立鸟取大学(山口大学联合培养)生物资源科学专业,农学博士;
1992.8~1997.12,福州大学轻工系、生物工程研究所实习研究员;
2001.4~2002.3,福州大学侨兴轻工学院、生物工程研究所,讲师;
2001.8~2001.11,日本国立山口大学,短期研究员;
2002.1~2011.8,福州大学生物科学与工程学院,副教授;
2003.1~2003.3,日本国立广岛大学,博士后研究员;
2004.6~2009.10,福州大学生物科学与工程学院,副院长;
2011.8~,福州大学生物科学与工程学院,教授;
2013.1~,福州大学生物工程研究所,所长;
2018.9~,福州大学至诚学院食品与生物工程系,系主任。
主要研究方向:
食品营养与健康,特别是基于肠道稳态作用研究超氧化物歧化酶(SOD)、食品以及药食两用中药来源的活性分子的保健作用;中餐工业化(预制菜),特别是传统食品的标准化与工业化研究。
获得荣誉、科研成果:
至今为止发表论文近200篇,申请专利20余项。两次中国食品科技学会科技创新优秀论文一等奖;2007年获得福州大学有史以来最大的单笔转让经费,三次福州大学科技推广应用奖。
第一作者:
方榕辉,高级工程师,福州大学至诚学院食品与生物工程系教师。
学习、工作经历:
2007.8~2019.5 福建闽中有机食品有限公司 研发总监;
2019.9~ 福州大学至诚学院 食品与生物工程系 教师。
主要研究领域:
主要从事农产品贮存与加工;餐饮标准化及菜肴产业化应用研究工作。
获得荣誉、科研成果:
获得授权发明专利4 项;参与项目《出口外销蔬菜冷冻干燥产业化关键技术研究》获莆田市科学技术奖三等奖;参与项目《枇杷深加工技术创新及产业化》获福建省科学技术进步奖三等奖。
本文《干制、储存条件及模拟消化对龙眼干中5-羟甲基糠醛含量的影响》来源于《食品科学》2024年45卷19期,作者:方榕辉, 桑婉婧, 程群, 刘树滔。DOI:10.7506/spkx1002-6630-20230515-139。点击下方阅读原文即可查看文章相关信息。
实习编辑:彤禾;责任编辑:张睿梅。点击下方阅读原文即可查看全文。图片来源于文章原文及摄图网
为深入探讨未来食品在大食物观框架下的创新发展机遇与挑战,促进产学研用各界的交流合作,由北京食品科学研究院、中国肉类食品综合研究中心、国家市场监督管理总局技术创新中心(动物替代蛋白)及中国食品杂志社《食品科学》杂志、《Food Science and Human Wellness》杂志、《Journal of Future Foods》杂志主办,西华大学食品与生物工程学院、四川旅游学院烹饪与食品科学工程学院、西南民族大学药学与食品学院、四川轻化工大学生物工程学院、成都大学食品与生物工程学院、成都医学院检验医学院、四川省农业科学院农产品加工研究所、中国农业科学院都市农业研究所、四川大学农产品加工研究院、西昌学院农业科学学院、宿州学院生物与食品工程学院、大连民族大学生命科学学院、北京联合大学保健食品功能检测中心共同主办的“第二届大食物观·未来食品科技创新国际研讨会”即将于2025年5月24-25日在中国 四川 成都召开。
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