提起CRISPR-Cas9, 很多人的第一反应都是 “基因 魔剪 ” —— 识别 靶标 、精准切割,改写基因组。但在细菌的CRISPR免疫系统里,决定“能不能精准出刀”的,往往不是切割,而是更早一步的适应阶段 (adaptation)—— 把外源DNA的一小段片段筛选、加工并整合进CRISPR阵列,形成可遗传的“免疫记忆”。
CRISPR-Cas系统通过将外源DNA片段写入宿主CRISPR阵列,建立可遗传的“免疫记忆”。在这一 过程中 ,系统不仅要从海量外源DNA中优先锁定带PAM线索的候选片段,还要将其加工成合规的spacer长度并保证方向性整合,才能为后续干扰阶段的精准识别打下基础。然而,在典型II-A型CRISPR系统中Cas1本身并不具备PAM识别能力,这使得“PAM如何被识别并与prespacer选择耦联”长期缺乏直接证据。
2026年2月16日 ,中国药科大学肖易倍团队 和新加坡国大 学骆敏团队 的合作 在MolecularCell发表题为Structural basis for Cas9-directed spacer acquisition in type II-A CRISPR-Cas systems的研究论文 ,通过解析II-A CRISPR系统中关键适应复合体的多种冷冻电镜结构,阐明该系统中所有四个蛋白,Cas9与Csn2、Cas1-Cas2组装成超级复合体共同完成这一系列流程的分子机制。研 究发现:Cas9在适应阶段并非单纯“出手切割”,而是承担前端“侦察 —— 筛查”的关键节点功能,与Csn2共同完成PAM扫描与prespacer定标,并通过“退出”触发整合模块重排,最终将合格片段交由Cas1–Cas2写入CRISPR阵列。
研究团队首先在体外稳定重构了Cas9、Csn2与Cas1–Cas2的四蛋白复合体,并捕捉到其apo状态的“休眠/待命”构象。该超级复合体中Cas9的关键结构域(尤其与活化相关的REC3区域)被Csn2与Cas1–Cas2界面约束在更为闭合的待机构象中,与实验观察到的Cas9 在 Csn2与Cas1–Cas2 存在的条件下 切割活性显著降低相一致,提示该装配形态更偏向于DNA侦察与候选片段筛查,从而避免适应阶段的非特异损伤。
为追踪PAM选择过程,研究团队设计了不与crRNA互补但含单一PAM的dsDNA底物。在DNA加入后,原先体积庞大的超级复合体发生显著重排,形成更紧凑的 前间隔序列( prespacer )捕获复合物 。在该状态下,Cas9与DNA形成可滑动、可检验 序列 的结合方式,提示Cas9可沿DNA进行 P AM扫描验证,并以PAM为关键判据锁定合格候选片段。
更为关键的是,结构显示dsDNA末端被导入Csn2的中心通道,并与复合体构型共同形成一种“导流槽 + 尺子”式的几何约束。在这一约束下,候选DNA片段被定标为约30 bp的标准长度,恰好匹配可被Cas1–Cas2整合的 前间隔序列的长 度。由此,Cas9负责PAM线索的扫描与验收,Csn2负责末端捕获与长度定标,两者协同将“可用材料”精准交付给 C as1-Cas2整合模块。
研究还捕捉到缺失Cas9的相关结构状态。值得注意的是,Cas9的“退场让路”并非简单解离,而是伴随Csn2–Cas1–Cas2装配体发生重排:原先受约束的PAM近端DNA被暴露出来,使Cas1–Cas2能够更顺畅地装载并进入后续的 前间隔序列 加工与方向性整合步骤。这一结构开关机制为理解II-A型系统如何完成PAM依赖选择与整合前准备,提供了关键线索。
综上,该研究在结构层面串联了II-A型CRISPR适应阶段的关键事件:休眠态复合体先将Cas9限制在低切割的待机姿态;游离的DNA末端被Csn2捕获后传导至Cas9,随后Cas9沿DNA滑动扫描并识别PAM序列;Csn2和Cas9共同将候选片段定标至约30 bp;随后Cas9解离触发装配体重排,暴露PAM近端DNA并促使Cas1–Cas2接管完成整合。这不仅重新定义了Cas9在细菌免疫中的角色,也为理解CRISPR记忆生成的“质量控制”提供了新的结构框架。
中国药科大学药学院 肖易倍 教授、生命科学院 陆美玲 副教授和新加坡国立大学骆敏教授为共同通讯作者,中国药科大学药学院 李兆星 研究员 、 博士研究生 李 钰 涛为共同第一作者。 此外。中国药科大学陈美容教授;研究生孔健平、吴宛倩、黄平平、曾婷、武倩倩、张煜;本科生刘勇峰、林瀚丰、侯力裘、刘宫羽,新加坡国立大学胡纯一教授、何雨瞳博士,以及艾迪贝克杨振煌博士对本课题的完成均付出了重要的贡献。
https://doi.org/10.1016/j.molcel.2026.01.024
制版人: 十一
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