(来源:生物谷)

转自:生物谷

胃癌是全球第五大常见恶性肿瘤,也是癌症相关死亡的第三大原因,每年新发病例超百万,整体五年生存率仅徘徊在 40% 左右。这一严峻现状的核心原因之一,是胃癌早期症状隐匿,多数患者确诊时已进展至中晚期,错失了手术根治的最佳时机。

而在胃癌的致病因素中,Helicobacter pylori(幽门螺杆菌)是公认的“头号元凶”——这种定居在人类胃黏膜的螺旋形细菌,感染了全球约 43.9% 的人口,总数超 44 亿,在部分发展中国家感染率甚至突破 70%。世界卫生组织早已将其列为一类致癌物,它与超过 90% 的非贲门胃癌、绝大多数胃黏膜相关淋巴组织淋巴瘤的发生直接相关。

但一个长期困扰学界的悖论是:幽门螺杆菌感染人群如此庞大,最终进展为胃癌的却只有极少数。这种 “高感染、低发病” 的差异,除了宿主遗传和环境因素外,也暗示细菌宿主之间存在着更为精细、隐秘的分子博弈。

一直以来,肿瘤坏死因子 α 诱导蛋白(Tipα)被认为是幽门螺杆菌的重要毒力因子,它几乎存在于所有临床分离的幽门螺杆菌菌株中,能诱导宿主产生炎症反应,也被证实与胃癌发生相关。

但围绕 Tipα 的研究始终充满矛盾:有的实验显示它有强烈的促炎作用,有的结果却十分温和,甚至出现完全相反的结论。这种混乱的根源,直到澳大利亚哈德逊医学研究所团队在Journal of Extracellular Vesicles发表最新研究才被揭开——Tipα 并非以游离蛋白的形式释放到胃腔中,而是绝大多数都被包裹在细菌分泌的外膜囊泡里,依靠这种微型 “运输舱” 完成跨膜递送和核定位。

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为了厘清 Tipα 的分泌形式与真实功能,研究团队在多株幽门螺杆菌中开展了实验,包括经典参考株 26695、小鼠定植株 SS1 等,还通过基因编辑构建了tipA基因缺失的突变株,以及将基因回补的 tipA⁺ 互补株,用于验证表型的特异性。他们分别用超速离心法和尺寸排阻色谱法两种主流方案分离细菌培养上清中的囊泡,并对囊泡的粒径、形态、蛋白组成进行了全面表征。

结果十分明确:无论是哪种分离方法得到的囊泡,都携带 Tipα 蛋白;而通过离心去除囊泡后的上清中,游离 Tipα 的含量极低。也就是说,幽门螺杆菌分泌的 Tipα,绝大多数都以囊泡结合的形式存在,而非游离扩散。进一步的蛋白酶 K 消化实验证实,Tipα 是被严密包裹在囊泡内部的,并非松散附着在囊泡表面,且以具有生物活性的二聚体形式封装,能在囊泡的保护下抵御外界的蛋白酶降解。

一个十分关键的发现是,囊泡的分离方法会显著影响最终的实验结果,这也恰好解释了为何既往研究结论难以统一。超速离心法得到的囊泡会保留更多表面结合的蛋白成分,而尺寸排阻色谱法虽然能得到纯度更高、粒径更均一的囊泡,却会在分离过程中让部分结合力较弱的蛋白(包括一部分 Tipα)从囊泡上脱落。两种方法得到的囊泡,在蛋白组成、Tipα 含量上都存在差异,后续刺激细胞产生的免疫反应自然也不相同。

这一结果也提醒学界,外囊泡研究的结论高度依赖分离方法,不同实验方案的结果不能直接简单对比。即使同为游离重组蛋白,不同菌株来源的 Tipα 促炎能力也存在差异:经典参考株 26695 的重组 Tipα 诱导炎症的能力,就显著强于小鼠适应株 SS1,这与两者蛋白序列上的氨基酸替换有关,其中一处位点恰好位于推测的核酸结合结构域附近,可能通过影响 DNA 结合能力改变了调控炎症的强度。

接下来,研究团队追踪了囊泡进入宿主细胞后的去向。共聚焦显微镜观察和细胞组分分离实验共同证实,幽门螺杆菌的囊泡被胃上皮细胞摄取后,最快 4 小时就能聚集到细胞核周围,其携带的 Tipα 也随之进入核内。

这一过程直接推翻了领域内流传已久的 “核素受体” 假说——此前人们普遍认为,游离 Tipα 通过结合细胞表面的核素实现内吞入胞。但这项研究发现,多种胃上皮细胞系的表面核素表达水平极低,主要都集中在核仁中。共免疫沉淀实验也没有检测到 Tipα 与核素的特异性结合;即使是表面核素很少的细胞,囊泡依然能高效递送 Tipα 入核。

也就是说,囊泡本身就具备穿越细胞膜、靶向核周的能力,Tipα 的入胞和核转运完全由囊泡介导,不需要依赖核素受体。更值得注意的是,电泳迁移率变动实验显示,不仅 Tipα 本身能结合 DNA,整个囊泡也具备结合宿主基因组 DNA 的能力,提示囊泡进入细胞核后,可能直接参与调控宿主基因的转录过程,这也让 Tipα 作为 “核调蛋白” 的功能有了更扎实的证据。

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通过尺寸排阻色谱(SEC)分离的幽门螺杆菌SS1野生型、tipA突变体及互补型tipA(tipA+)菌株来源的细胞外囊泡(EVs)的表征

最颠覆认知的,是 Tipα 的功能反转。既往使用游离重组 Tipα 的实验,都证明它能诱导 TNF、IL-8 等促炎因子的产生,是典型的促炎毒力因子。

但当研究人员用囊泡形式的 Tipα 刺激宿主细胞时,结果却完全相反:与野生型菌株的囊泡相比,缺失tipA的突变株囊泡,反而诱导了更强的 TNF 和 IL-8 表达。这意味着,包裹在囊泡里的 Tipα,实际作用是抑制宿主的促炎免疫应答。

这一看似矛盾的现象,恰恰符合幽门螺杆菌的生存策略:通过囊泡向宿主细胞递送 Tipα,适度抑制局部炎症反应,削弱宿主的免疫清除能力,从而在胃黏膜中实现长达数十年的慢性定植。而这种持续的、低度的慢性感染状态,会不断造成胃黏膜损伤和修复循环,逐步积累 DNA 突变,最终推动正常黏膜向胃炎、肠化生、癌变方向演进。

研究还补充了 Tipα 的进化与体内功能证据。通过生物信息学分析发现,Tipα 在所有能定植于胃部的幽门螺杆菌及近缘物种中高度保守,在肠道定植的螺杆菌中则不存在,说明它是细菌适应胃内环境、实现定植的关键因子。

小鼠定植实验也验证了这一点:缺失tipA的幽门螺杆菌菌株,在小鼠胃内的定植能力显著下降,胃黏膜中的 TNF 水平也更低,进一步证明 Tipα 帮助细菌在宿主体内建立持续感染。不过研究也指出,目前分析的临床菌株数量有限,暂未观察到 Tipα 分泌量与胃癌严重程度的直接关联,这一问题还需要更大样本的临床队列来验证。

这项研究首次完整证实了细菌的核调蛋白可以通过外膜囊泡完成分泌、跨膜递送与核转运,填补了该领域长期存在的机制空白,也让 Tipα 的种种矛盾结论有了统一的解释。从临床转化的角度看,这一发现也带来了新的方向:既然携带 Tipα 的囊泡是幽门螺杆菌致病的关键 “特洛伊木马”,那么胃液、血液中这类囊泡的水平,或许可以作为评估感染者胃癌风险的无创生物标志物;而靶向囊泡的生成、阻断囊泡被上皮细胞摄取,也可能成为削弱幽门螺杆菌致病力、延缓胃黏膜病变的新策略。

当然,目前这些结论仍基于细胞实验和小鼠模型,囊泡在人体感染中的真实作用、Tipα 结合 DNA 的精确位点及对宿主基因的具体调控效应,都还需要更深入的研究验证。但毫无疑问,这层包裹着毒蛋白的纳米脂质囊泡,正是幽门螺杆菌在与人类漫长共演化中练就的隐秘武器,看清它的真面目,也为我们对抗胃癌元凶找到了新的突破口。

参考文献:

Jack K Emery,Variya Nemidkanam,Nina Colon, et al. Outer Membrane Vesicles Mediate the Secretion and Nuclear Trafficking of a Bacterial Nucleomodulin, Journal of Extracellular Vesicles (2026). DOI: 10.1002/jev2.70286.