B 细胞前体急性淋巴细胞白血病(BCP-ALL)是最常见的儿童恶性肿瘤,其特征是骨髓中 B 前体细胞的恶性转化和克隆扩增。研究表明,骨髓微环境促进白血病生成并导致细胞耐药性。骨髓来源的间充质基质细胞(MSC)是骨髓微环境的主要组成部分。以往研究报道,当与 MSC 的相互作用被破坏时,白血病细胞在体外对化疗药物重新敏感,例如,通过干扰隧道纳米管(TNTs)的形成。白血病细胞使用隧道纳米管作为与 MSC 通讯的有效机制。隧道纳米管的破坏导致 MSC 分泌的细胞因子谱发生变化,并降低白血病细胞的生存优势。这些发现表明,MSC 在 BCP-ALL 的维持中起重要作用,尽管机制尚不清楚。

最近,为了阐明潜在的机制,荷兰乌得勒支 Princess Máxima 儿科肿瘤学中心课题组研究了白血病细胞对 MSC 基因表达谱的影响,并探讨了差异表达基因是否影响 BCP-ALL 的存活和药物反应性。研究表明,干扰素(IFN)α/β 通路在 BCP-ALL 细胞与 MSC 细胞相互作用时被选择性激活;然而对该通路的干扰不会影响其活性和耐药性。这表明 IFNα/β 反应可能在 BCP-ALL 的病理生物学中发挥不同的作用。研究成果发表在 Haematologica 杂志题为“B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia elicits an interferon-α/β response in bone marrow-derived mesenchymal stroma”。

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首先,将暴露于原发性 BCP-ALL 患者样本细胞与 MSC 建立共培养(图1 A)。RNA 测序数据显示,与 BCP-ALL 细胞共培养后,MSC 中 IFN 通路激活的基因富集。所有三种被测试的骨髓来源 MSC(MSC#1-3)在与 BCP-ALL 细胞共培养中具有相似水平的 IFN 相关基因表达增加,表明白血病诱导的表达变化与 MSC 的来源无关(图1 B)。

与单独培养的 MSC 相比,与 BCP-ALL 共培养时,包括 IFI6、MX1、IFI27 和 OAS3 在内的 IFN 相关基因在 MSC 中上调 4.3 至 7.7 倍(图1 B),其他 IFN 相关基因如 IFITM1、IFI44L、IFIT1 和 ISG15 也显著上调。反之,BCP-ALL 细胞中未发现 MSC 诱导的 IFN 特征基因表达的变化。

在与最常见的融合基因 ETV6-RUNX1 阳性 BCP-ALL 细胞共培养后 MSC 中 IFN 相关基因的表达显著高于与 B-other BCP-ALL 细胞共培养的 MSC 中的表达,如 IFI6、MX1 和 OAS3。根据对患者 ALL 细胞的观察,注意到暴露于 ETV6-RUNX1 阳性细胞系 REH 细胞(人急性非B非T淋巴细胞白血病细胞)的 MSC 持续上调 IFNα/β 基因。MSC 暴露于健康免疫细胞不会诱导典型的 IFN 特征,然而,却观察到 CXCL10 表达的诱导,这很可能是由于与单核细胞的相互作用。这些数据表明,IFN 特征是由 BCP-ALL 细胞选择性诱导的,最深的是 ETV6-RUNX1 阳性 ALL 细胞,因为 MSC 与健康免疫细胞的共培养不会引起类似的 IFN 特征。

图1 B 细胞前体急性淋巴细胞白血病细胞在间充质基质细胞中诱导
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图1 B 细胞前体急性淋巴细胞白血病细胞在间充质基质细胞中诱导

之前的研究表明,白血病细胞的活力取决于通过隧道纳米管介导的与 MSC 的密切直接接触,这可以从共培养上室中预先标记的 ALL 细胞转移到下室中的 MSC 看出(图2 A、B)。尽管阻止隧道纳米管的形成显著降低了 CXCL10、IFI44L 和 IFITM1的表达水平,但并非所有测试基因都受到影响(如IFI6、IFITM1、MX1、IFI27)(图2 C)。这表明隧道纳米管-依赖性信号仅部分导致 MSC 中 BCP-ALL 诱导的基因表达变化。

进一步地,为了检测 MSC 中 IFN 相关基因的上调是否对原代 BCP-ALL 细胞的活力有因果影响,敲低了 IFI6、MX1、IFI27、IFI44L 和 ISG15 基因。与对照相比,敲低几个 IFN 相关基因后 MSC 的活力基本不受影响,但 shIFI27 处理的 MSC 除外。在3天的培养实验中,暴露于 ETV6-RUNX1 阳性细胞后,MSC 中观察到的强 IFN 基因特征的沉默并未显著降低原代 ETV6-RUNX1 BCP-ALL 细胞的活力。此外,在共培养40或120小时后,在 MSC 中沉默 IFN 信号通路的关键调节因子STAT 1 也不会导致 ALL 活力改变。因此,通过沉默单个 IFN 相关基因干扰 IFN 信号不会影响白血病细胞的生存活性。

图2 直接的细胞间接触有助于诱导间充质基质细胞中干扰素相关
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图2 直接的细胞间接触有助于诱导间充质基质细胞中干扰素相关

值得注意的是,与 BCP-ALL 细胞和 MSC 的单培养中检测到的水平相比,共培养环境中分泌的 IFNα(和 IFNb)水平减少,这种影响与 ETV6-RUNX1 状态无关。这是值得探讨的,因为 ETV6-RUNX1 阳性细胞明显诱导了 MSC 中 IFN 相关基因的表达。与 BCP-ALL 共培养后,MSC 中 IFNα/β 结合 IFNAR1 而非 IFNGR2 的表达水平降低,这与 ETV6-RUNX1 状态也无关。IFNy 受体基因 IFNGR1 和 IFNGR2 的表达水平是可变的,与 ETV6-RUNX1 状态无关。

MSC 中的基因调控对 IFNα/β 敏感,因为将重组 IFNa 和 IFNb 添加到 MSC 的单培养中明显诱导了 MSC 中 IFN 指数基因 IFI6 的表达。相应地,通过同时添加 IFNα/β 信号抑制剂来阻止 ETV6-RUNX1 介导的 IFI6 表达诱导,在孵育40小时后分别导致56倍和27倍的减少,在孵育120小时后分别导致35倍和12倍的减少(图3 A)。ETV6-RUNX1 BCP-ALL 诱导的 MSC 中 IFN 相关基因的表达在暴露于 IFNa/b 抑制剂而非 IFNy 抑制剂时也降低(图3 B)。然而,在孵育 40 小时或 120 小时后,添加这些抑制剂并不影响 BCP-ALL 细胞与 MSC 共培养的活力,而 MSC 在延长孵育 120 小时时显然为 ETV6-RUNX1 BCP-ALL 细胞提供了生存优势(图3 C),而这种优势对 IFNa/b 抑制不敏感(图3 C)。这说明,BCP-ALL 细胞在 MSC 中触发 IFNα/β 但不触发 IFNy 反应。

此外,IFNa/b 抑制剂不调节 MSC 诱导的 ETV6-RUNX1 BCP-ALL 细胞对常用药物 L-门冬酰胺酶、柔红霉素和泼尼松龙的耐药性。这表明,BCP-ALL 细胞对三种化疗药物的耐药水平不受 MSC 中 IFN 信号阻断的影响。

图3 干扰素介导的反应不会影响原发性 ETV6-RUNX1 B 细胞活力。
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图3 干扰素介导的反应不会影响原发性 ETV6-RUNX1 B 细胞活力。

总之,该研究表明,IFNα/β 而不是 IFNy 有助于 MSC 中 BCP-ALL 触发的 IFN 特征。MSC 中 IFN 相关基因的诱导不会影响暴露于 MSC 时观察到的 BCP-ALL 细胞的活力和耐药水平。研究数据支持进一步研究 BCP-ALL 诱导的 IFNα/β 反应的作用,尤其是在 ETV6-RUNX1 阳性 ALL 的情况下。这可能会增加我们对白血病细胞如何操纵免疫微环境的理解,这些知识在基于细胞的免疫疗法的新兴领域非常重要。

参考文献:Smeets MWE, Steeghs EMP, Orsel J, Stalpers F, Vermeeren MMP, Veltman CHJ, Slenders L, Nierkens S, Van de Ven C, Den Boer ML. B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia elicits an interferon-α/β response in bone marrow-derived mesenchymal stroma. Haematologica. 2024 Jul 1;109(7):2073-2084. doi: 10.3324/haematol.2023.283494. PMID: 38426282; PMCID: PMC11215384.原文链接:https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38426282/或点击阅读原文图片来源:所有图片均来源于参考文献

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